Activity of antioxidant enzymes in cattle spermatozoa during cryopreservation
- Authors: Ivashchenko M.N.1, Deryugina A.V.2, Belov A.A.1, Latushko M.I.2, Eremin A.P.1
-
Affiliations:
- Nizhny Novgorod State Agrotechnological University named after L.Ya. Florentyev
- Nizhegorodsky State University named after N.I. Lobachevsky
- Issue: Vol 10, No 1 (2025)
- Pages: 66-70
- Section: VETERINARY MEDICINE AND ZOOTECHNICS
- URL: https://bulletin.ssaa.ru/1997-3225/article/view/683650
- DOI: https://doi.org/10.55170/1997-3225-2025-10-1-66-70
- ID: 683650
Cite item
Full Text
Abstract
The aim of the research is to evaluate the activity of enzymatic antioxidants in bull sperm after thawing, in order to understand the molecular mechanisms of reducing the fertilizing ability of sperm during cryopreservation/thawing. The object of the study was the sperm production of black-and-white Holstein bulls at the age of 3 years. The sperm was diluted with a sterile BioXcell medium. The same ejaculate was subjected to two treatments: fresh – evaluated immediately after adding diluent at 37°C and defrosted – evaluated 60 and 120 minutes after defrosting. The intensity of free radical processes in spermatozoa was determined by determining the concentration of malondialdehyde in cells. The effectiveness of the enzymatic link of the antioxidant system was determined by changes in the activity of superoxide dismutase and catalase. Based on the conducted studies, it was found that after cryopreservation, the content of malondialdehyde was higher by an average of 25%. The antioxidant potential of superoxide dismutase after cryopreservation did not depend on the incubation period and increased by an average of 23%, the activity of catalase after freezing / thawing of sperm did not change. Assessing the level of oxidative stress and the activity of the antioxidant system is important for understanding the molecular mechanisms associated with a decrease in cattle productivity.
Full Text
Криоконсервация спермы крупного рогатого скота является важным методом сохранения и эффективного использования генетического материала от высокоценных производителей. Несмотря на большое разнообразие криопротекторов, эффективность криоконсервации спермы быков ограничена. Снижение оплодотворяющей способности криоконсервированной спермы может быть связано с изменением структуры плазматической мембраны, нарушением липидного профиля в мембране сперматозоидов. Высокое содержание полиненасыщенных жирных кислот в мембране спермиев объясняет восприимчивость половых клеток к оксидативному стрессу [1, 2].
В биотехнике воспроизводства для оценки репродуктивной функции используется анализ спермы, включающий определение подвижности, морфологии, концентрации сперматозоидов, что являются лишь косвенным показателем качества спермы.
Оценка активности антиоксидантных ферментов позволит провести анализ метаболических характеристик сперматозоидов при криоконсервации. В частности, криоконсервация усиливает выработку активных форм кислорода, обладающих выраженной реакционной способностью. Низкие уровни активных форм кислорода, продуцируемые сперматозоидами, участвуют в обеспечении оплодотворяющей способности. Избыточное образование активных форм кислорода может приводить к повреждению сперматозоидов. Образующиеся активные формы кислорода атакуют жизненноважные биомолекулы, изменяя работу ферментативных систем, белков, ДНК и различных мембранных структур клетки [3-5].
Сперматозоиды в норме содержат антиоксиданты, которые защищают половые клетки от повреждающего действия активных форм кислорода. Ферменты – супероксиддисмутаза и каталаза образуют антиоксидантную пару, которая борется со свободными радикалами кислорода, не давая им возможности запустить процессы свободнорадикального окисления [6, 7]. Супероксиддисмутаза – фермент, катализирующий дисмутацию супероксидного радикала до перекиси водорода и молекулярного кислорода тем самым предотвращая повреждение полиненасыщенных жирных кислот мембраны сперматозоидов, стабилизируя текучесть мембраны и восстанавливая подвижность половых клеток. Каталаза катализирует разложение перекиси водорода до воды и молекулярного кислорода [6, 8].
Цель исследований – оценка активности ферментативных антиоксидантов сперматозоидов быков после оттаивания, для понимания молекулярных механизмов снижения оплодотворяющей способности спермы в процессе криоконсервации и оттаивания.
Задачи исследований – определить содержание малонового диальдегида как показателя, отражающего интенсивность протекания свободнорадикальных процессов и активность ферментов антиоксидантов – супероксиддисмутазы и каталазы в сперматозоидах крупного рогатого скота.
Материалы и методы исследований. Материалом для исследований служила спермопродукция чёрно-пёстрых голштинизированных быков в возрасте 3 лет. Было использовано около 100 эякулятов быков. Сбор спермы проводили в соответствии с Национальной технологией замораживания и использования спермы племенных быков-производителей [9]. Использовали свежеполученное семя с подвижностью сперматозоидов более 7 баллов, минимальным количеством аномальных форм клеток.
Сперму разбавляли стерильной средой «BioXcell» (Франция). Один и тот же эякулят подвергался двум обработкам: свежий – оценивался сразу после добавления разбавителя при температуре 37°C и размороженный – оценивался после размораживания через 60 и 120 минут. В группе с размороженным эякулятом перед началом исследований соломины со спермой (0,25 мл) размораживали на водяной бане в течение 1 мин. Освобождение сперматозоидов от семенной плазмы осуществляли путём отмывания физраствором.
Криоконсервацию спермы проводили путам смешивания с разбавителем в отношении 1:1 при 27°С, далее образцы охлаждали до 18-22°С, затем производили окончательное разбавление, фасовку и эквилибрацию (выдержка при 4°С в течение 3-4 часов). Потом проводили охлаждение спермы в течение 7,5 минут до температуры -145°С, для длительного хранения контейнер с образцами помещали в жидкий азот, при температуре -196°С.
В сперматозоидах определяли интенсивность протекания свободнорадикальных процессов путем определения в клетках концентрации малонового диальдегида (МДА) (Владимиров, Арчаков, 1972) [1].
Для исследования активности в сперматозоидах антиоксидантных ферментов – супероксиддисмутазы и каталазы были использованы стандартные методики (Сирота, 2016) [11], (Рецкий, 2010) [12].
Математическая и статистическая обработка полученных результатов проводилась с помощью пакета программ Statistic 10,0 и Microsoft Excel 2000. В случае распределения близкого к нормальному количественные показатели представлялись в виде средних значений ± стандартная ошибка средней величины. Уровень значимости (Р) был принят равным или меньшим 0,05. Поиск межгрупповых различий проводили методом сравнения средних значений по критерию Стъюдента для выборочных средних значений.
Результаты исследований. Одним из информативных маркеров окислительного стресса в биологических субстратах считается малоновый диальдегид, который является одним из конечных продуктов перекисного окисления полиненасыщенных жирных кислот в клетке [13, 14].
Таблица
Влияние криоконсервации на перекисное окисление липидов и активность антиоксидантных ферментов в сперматозоидах быков
Показатели | Исходно | После размораживания через 60 мин | После размораживания через 120 мин |
МДА (нМоль/мл) | 0,61±0,32 | 0,85±0,14 * | 0,74±0,28 * |
СОД, ед.акт./мг белка | 0,61±0,08 | 0,78±0,09 * | 0,72±0,12 * |
Каталаза, мкат/мг | 9,03±0,76 | 8,48±0,82 | 8,59±0,91 |
Примечание: «*» – статистически значимые различия по отношению к сперматозоидам до криоконсервации, р≤0,05
Данные, полученные в нашем эксперименте, свидетельствуют о том, что после криоконсервации на протяжении всего эксперимента отмечалось повышение уровня малонового диальдегида относительно интактных сперматозоидов, что указывает на активизацию свободнорадикальных процессов в клетках (табл.). Через час уровень МДА был повышен на 30%, через два часа на 21%.
Считается, что основным негативным эффектом окислительного стресса в сперматозоидах является перекисное окисление липидов (ПОЛ). ПОЛ вызывает угнетение синтеза макроэргов, что, в свою очередь, приводит к снижению подвижности сперматозоидов [15-17]. В результате совокупности повреждений, вызванных окислительным стрессом, часть клеток сперматозоидов подвергается апоптозу, и они теряют подвижность. Более того, даже после оплодотворения эмбрионы, полученные от самцов с высоким уровнем окислительного стресса в семенной жидкости, имеют более высокую вероятность выкидыша из-за повреждения ДНК и окислительной модификации белков [18, 19].
Результаты по оценке активности ферментов антиоксидантной защиты в сперматозоидах быков, полученные в наших экспериментах представлены в таблице. Анализ полученных данных показал, повышение активности супероксиддисмутазы в сперматозоидах после криоконсервации на 28% и 18% через 60 и 120 минут соответственно. Вероятно, отмеченный эффект является компенсаторной реакцией на усиление процессов перекисного окисления липидов в клетках, поскольку этот фермент первым вступает в процесс антиоксидантной защиты (табл.). Активность каталазы после криоконсервации спермы не отличалась от показателей интактных клеток.
Таким образом, можно констатировать, что криоконсервация спермы негативно отражается на оксидативно-антиоксидантном статусе, что может являться одним из патогенетических факторов нарушения репродуктивной функции быков.
Заключение. Процесс криоконсервации спермы быков голштинской породы, сопровождается изменением в цитоплазматической мембране сперматозоидов липид-белковых взаимодействий и метаболических характеристик спермиев, вызванных окислительным стрессом. Антиоксидантный потенциал супероксиддисмутазы после криоконсервации не зависел от инкубационного периода, активность каталазы после замораживания и оттаивания спермы не изменялась.
About the authors
Marina N. Ivashchenko
Nizhny Novgorod State Agrotechnological University named after L.Ya. Florentyev
Author for correspondence.
Email: kafedra2577@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-6642-8518
Candidate of Biological Sciences, Associate Professor
Russian Federation, Nizhny NovgorodAnna V. Deryugina
Nizhegorodsky State University named after N.I. Lobachevsky
Email: derugina69@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-8812-8559
Doctor of Biological Sciences, Associate Professor
Russian Federation, Nizhny NovgorodAndrey A. Belov
Nizhny Novgorod State Agrotechnological University named after L.Ya. Florentyev
Email: andrey.raven@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-4869-5054
Candidate of Biological Sciences, Associate Professor
Russian Federation, Nizhny NovgorodMikhail I. Latushko
Nizhegorodsky State University named after N.I. Lobachevsky
Email: ancord.m@yandex.ru
ORCID iD: 0009-0000-2997-0228
Candidate of Technical Sciences
Russian Federation, Nizhny NovgorodAnatoly P. Eremin
Nizhny Novgorod State Agrotechnological University named after L.Ya. Florentyev
Email: erapnn@yandex.ru
ORCID iD: 0009-0002-0550-4876
Candidate of Veterinary Sciences, Associate Professor
Russian Federation, Nizhny NovgorodReferences
- Deryugina, A. V., Ivashchenko, M. N. & Lodyanoj, M. S. (2022). Ocenka rezistentnosti membran spermatozoidov bykov v processe dolgosrochnogo hraneniya. Estestvennye i tekhnicheskie nauki (Natural and technical sciences), (164), 107-109. (in Russ).
- Cocuzza, M., Sikka, S. C., Athayde, K. S. & Agarwal, A. (2007). Clinical relevance of oxidative stress and sperm chromatin damage in male infertility: an evidence based analysis. Int Braz J Urol, (33), 603-621.
- Piskarev, I. M., Ivanova, I. P., Samodelkin, A. G. & Ivashchenko, M. N. (2016). Iniciirovanie i issledovanie svobodno-radikal'nyh processov v biologicheskih eksperimentah. Nizhnij Novgorod. 106 s. (in Russ).
- Lenzi, A., Gandini, L., Picardo, M., Tramer, F., Sandri, G. & Panfili E. (2000). Lipoperoxidation damage of spermatozoa polyunsaturated fatty acids (PUFA): scavenger mechanisms and possible scavenger therapies. FrontBiosci, (5), 1-15.
- Tarozzi, N., Bizzaro, D., Flamigni, C. & Borini, A. (2007). Clinical relevance of sperm DNA damage in assisted reproduction. Reprod Biomed Online, (14), 746-757.
- Agarwal, A., Virk, G., Ong, C. & du Plessis, S.S. (2014). Effect of oxidative stress on male reproduction. The World Journal of Men's Health, (32), 1-17.
- Safarinejad, M. R. (2011). Effect of pentoxifylline on semen parameters, reproductive hormones, and seminal plasma antiox-idant capacity in men with idiopathic infertility: a randomized double-blind placebo-controlled study. International urology and nefhrology, (43), 315-328.
- Mora-Esteves C., Shin D. (2013). Nutrient supplementation: improving male fertility fourfold. Semin Reprod Med, (31), 293-300.
- Nacional'naya tekhnologiya zamorazhivaniya i ispol'zovaniya spermy plemennyh bykov-proizvoditelej / pod red. A.I. Abilova, N.M. Reshetnikovoj. M. : 2008. 160 s. (in Russ).
- Vladimirov, Yu. A. & Archakov, A. I. (1972). Perekisnoe okislenie lipidov v biologicheskih membranah. M.: Nauka. 252 s. (in Russ).
- Sirota, T. V. (2016). Standartizaciya i regulyaciya skorosti superoksidgeneriruyushchej reakcii avtookisleniya adrenalina, ispol'zuemoj dlya opredeleniya pro/antioksidantnyh svojstv razlichnyh materialov. Biomedicinskaya himiya (Biomedical Chemistry), (6), 650-655. (in Russ).
- Reckij, M. I. (2010). Metodicheskie polozheniya po izucheniyu processov svobodnoradikal'nogo okisleniya i sistemy antioksidantnoj zashchity organizma. Voronezh. 69 s. (in Russ).
- Miroshnikov, S., Zavyalov, O., Frolov, A., Poberukhin, M., Sleptsov, I. I. & Sirazetdinov, F. (2019). The content of toxic elements in hair of dairy cows as an indicator of productivity and elemental status of animals. Environmental Science and Pollution Research, (18), 18554-18564.
- Ohta, S. (2017). Recent progress toward hydrogen medicin: potential of molecular hydrogen for preventive and therapeutic application. Current Pharmaceutical Design, (17), 2241-2252.
- McQueen, D. B., Zhang, J., Robins, J. C. (2019). Sperm DNA fragmentation and recurrent pregnancy loss: A systematic review and meta-analysis. Fertil. Steril, (112), 54-60.
- Ohta, S. (2014). Molecular hydrogen as a preventive and therapeutic medical gas: initiation, development and potential of hydrogen medicine. Pharmacology & Therapeutics, (144), 1-11.
- Rivlin, J., Mendel, J., Rubinstein, S., Etkovitz, N. & Breitbart, H. (2004). Role of hydrogen peroxide in sperm capacitation and acrosome reaction. Biol. Reprod, (70), 518-522.
- Koskimaa, H. M. (2012). Human Papillomavirus Genotypes Present in the Oral Mucosa of Newborns and Their Concordance with Maternal Cervical Human Papillomavirus Genotypes. J Pediatr, (5), 837-843.
- Ohta, S. (2015). Molecular hydrogen as a novel antioxidant: Overview of the advantages of hydrogen for medical applications. Methods in Enzymology, (555), 289-317.
Supplementary files
